服務介紹
亞克隆和載體構建是基因工程中常用的技術手段，主要用於將目的基因插入到載體DNA分子中，構建成重組DNA分子。亞克隆是將DNA分子從一個載體轉移到另一個載體的過程，通常采用限製性內切酶切割DNA分子，將目的DNA片段插入到另一個載體中。載體構建是將目的基因插入到已有的載體分子中，通常通過PCR擴增和限製性內切酶切割等技術實現。這些技術在基因工程、生物製藥、農業生產等領域都有著廣泛的應用，為研究人員提供了一種有效而可靠的重組DNA分子構建方法
服務優勢
- 金開瑞自主研發了高通量，低成本的載體構建技術，能快速高效的幫您構建感興趣的多種載體，極大程度為您節約時間成本，讓您寶貴的時間花在“刀刃上”。
服務流程
客戶提供
客戶提供目的序列信息；
目的序列需要插入的載體信息，包括序列，抗性，測序引物，克隆位點；
樣品：
1）包含目的序列的模板質粒，模板質粒的抗性；
2）目的載體（金開瑞無法提供載體情況下）
模板質粒中包含目的基因序列這段的峰圖格式測序報告（並非整個模板質粒的測序報告）
最終交付
- 約4 µg含有目的片段的高純度凍幹質粒DNA；
- 含有重組質粒的穿刺菌或甘油菌一管（默認菌株為TOP10具體以樣品管壁標簽為準）；
- 發貨文件主要包括如下內容：測序結果、COA報告、sqd文件、seq文件。
服務說明
| 業務類型 | 基因長度 | 周期 |
| 亞克隆 | 0~1.5kb | 5-8 |
| 1.5kb~3kb | 7-10 | |
| 3kb~4kb | 8-13 | |
| 4kb~5kb | 10-15 | |
| 5kb~10kb | 谘詢 | |
| 服務項目 | 基因長度 | 服務周期 |
| 載體構建 | 0-70bp | 7-10 |
相關資源
1、亞克隆實驗步驟及注意事項
（1）實驗步驟
①DNA片段製備：
● 確保選擇正確的酶切酶和緩衝液，以確保準確的酶切反應。
● 根據實驗需求，選擇適當的酶切時間和溫度。
● 注意避免DNA片段汙染和降解，使用無菌和無核酸酶的實驗操作。
②載體DNA準備：
● 確保載體DNA質量高，無降解和汙染。
● 使用正確的酶切酶和緩衝液，以確保正確的酶切反應。
● 注意選擇正確的酶切時間和溫度，以避免過度酶切或不完全酶切。
③連接反應：
● 根據需要，選擇適當的連接酶和緩衝液，並按照推薦的酶和DNA比例進行反應。
● 確保反應溫度和時間適宜，以獲得高效的連接效果。
● 考慮使用陽性和陰性對照進行驗證連接反應的成功與否。
④轉化：
● 根據實驗目的選擇合適的轉化方法（如化學轉化、電穿孔等）。
● 嚴格控製轉化條件，包括細胞的生長狀態、轉化時間和DNA的濃度等。
● 根據不同細胞類型的要求，選擇合適的培養基和培養條件。
⑤篩選與鑒定：
● 根據實驗設計，使用適當的篩選標記（如抗生素抗性基因）進行轉化子的篩選。
● 進行PCR擴增和測序分析，以確認所獲得的克隆是否包含目標DNA序列。
● 進行限製性酶切鑒定或其他分子生物學方法，驗證重組DNA的準確性和完整性。
（2）注意事項：
● 嚴格遵守實驗室的安全操作規範，使用無菌和無核酸酶的實驗操作。
● 注意實驗中的溫度、時間、酶切酶和緩衝液的選擇，以確保反應的準確性和高效性。
● 使用正確的陽性和陰性對照，確保實驗結果的可靠性。
● 在轉化和篩選過程中，注意細胞的生長狀態和培養條件，以確保轉化效率和克隆的存活率.
2、不同轉化方法的簡介及優劣勢對比
| 轉化方法 |
簡介 |
優勢 | 劣勢 | 示例 |
| 熱激轉化法 | 利用高溫衝擊使細胞膜通透，導入外源DNA | 簡單易行，適用於多種微生物 | 轉化效率較低，可能對細胞產生損傷 | 將外源DNA加入大腸杆菌中進行轉化 |
| 電穿孔法 | 通過電場脈衝使細胞膜形成孔隙，使DNA進入細胞 | 適用於多種細胞類型，轉化效率高 | 需要專門設備，可能對細胞產生損傷 | 用電穿孔儀對哺乳動物細胞進行轉化 |
| 鈣離子共沉澱法 | 利用鈣離子和DNA共同沉澱，通過吸附實現轉化 | 操作簡單，適用於多種細胞類型 | 轉化效率相對較低，需要特定緩衝液 | 用鈣離子法將DNA轉化至昆蟲細胞 |
| 脂質體轉染法 | 利用脂質體封裝外源DNA，與細胞膜融合實現轉化 | 適用於多種細胞類型，轉化效率高 | 成本較高，複雜操作步驟 | 使用脂質體轉染法將DNA轉化至培養的哺乳動物細胞 |
| 生物素化轉染法 | 利用生物素化技術將DNA與生物素結合，與目標細胞特異性結合實現轉化 | 可實現細胞特異性轉化，轉化效率較高 | 增加實驗成本，結合穩定性需考慮 | 利用生物素化轉染法將DNA轉化至特定細胞亞群 |
| 離子轉染法 | 利用離子的作用使細胞膜通透性增加，使DNA進入細胞 | 適用於多種細胞類型，轉化效率較高 | 需要優化離子條件，離子毒性問題 | 利用離子轉染法將DNA轉化至植物細胞 |
常用的載體驗證方法
● 酶切鑒定：通過對構建的載體進行限製酶切消化，驗證目標基因是否正確插入載體。將載體與適當的限製酶一起切割，然後進行瓊脂糖凝膠電泳分析，觀察目標片段的出現。
● PCR驗證：使用引物對構建的載體進行PCR擴增，檢測目標基因的存在。通過設計引物，可選擇性擴增目標基因片段，並通過瓊脂糖凝膠電泳分析確認擴增產物的大小。
● DNA測序：進行構建的載體進行全序列或部分序列測序，以驗證目標基因的正確性和序列準確性。通過與設計的序列進行比對，確認插入的目標基因是否與預期一致。
● 蛋白質表達驗證：將構建的載體轉化至適當的宿主細胞中，並通過蛋白質表達分析確認目標基因的蛋白質表達情況。可通過Western blot、ELISA等方法檢測目標蛋白質的表達水平和純度。
● 功能性驗證：根據載體的功能設計相應的實驗驗證。例如，如果載體是用於表達蛋白質的，可以通過功能性分析，如酶活性測定、細胞增殖或細胞凋亡實驗等，驗證目標基因的功能。
以上方法可以單獨或結合使用，以確保構建的重組載體的正確性和功能性。在進行載體驗證時，注意選擇合適的實驗方法和控製組，嚴格操作實驗步驟，以獲得可靠的結果。
