服务介绍
常规的动物实验包括：
（1）实验动物代购、饲养、观察和免疫等；
（2）实验动物给药（静脉给药、灌胃给药、腹腔注射、尾静脉注射、皮下注射、滴鼻给药等）；
（3）动物行为学检测（水迷宫、旷场、强迫游泳、转棒实验等）；
（4）药效学、药物毒理学评价与研究；
（5）动物取血、组织取样、包埋、切片与相关病理学检测（HE染色、Masson染色，免疫组织化学、免疫荧光等）；
（6）影像学检查（超声、micro CT、MRI、活体荧光成像等）。
服务优势
- 专业：有多年从事动物实验的技术人员，熟悉各类给药和动物组织取材操作；
- 用心：细心呵护每一个实验动物，严格遵循动物福利原则，减少不必要的损失；
- 全面：涉及动物实验的全流程，从动物采买到检测，提供一站式动物实验服务；
- 贴心：在实验前，我们会仔细评估动物实验方案，规划详细的分组、只数、剂量、周期，致力于给您提供最合理、最经济、最受审稿人青睐的方案。
服务流程
客户提供
实验需求、实验目的、检测指标、相关实验药物（如中药类、自研化合物类、菌液等）
最终交付
- 指标检测结果、组织蜡块、染色切片等。
服务说明
如果您寄送的样本或者实验药物涉及人身危害或者携带病原菌，请您务必提前告知。
我们的实验结果一定真实、可查，实验过程中不做结果预判和趋势预测，以实际为准，请您知晓。
免疫实验中用到的一抗二抗，可以您方提供，也可我方购买，在报价中体现。
行 为 学 检 测
动物行为学主要侧重于科学和客观地研究自然条件下的动物行为，研究对象包括动物的自主探索、学习行为、情绪表达等，是现代神经科学研究的重要技术之一。
病 理 学 检 测
动物组织制成的切片本身是没有颜色的，在显微镜下无法进行识别，为了能更清晰地在显微镜下观察到组织，区别不同的细胞结构，以判断病变性质，常需要对病理切片进行染色。
免 疫 学 染 色
影 像 学 检 测
做影像检查，就是为了获取有效的影像资料，第一时间明确发病器官、所在部位、病灶大小，把实际情况反映出来，给诊断和治疗提供依据。
相关资源
1、当进行实验动物的抓取固定时，需要根据不同动物的大小、特性和实验目的采用不同的方法。以下是针对小鼠、大鼠和兔子等常见实验动物的详细抓取固定方法：
（1）小鼠抓取固定法：
● 方法：在进行小鼠抓取固定之前，需要先让小鼠适应实验环境。戴上手套，用拇指和食指夹住小鼠的颈部，将小鼠提起并固定住，同时用另一只手控制小鼠的后臀部，确保全身固定。
● 注意事项：小鼠比较敏感，进行抓取固定时要轻柔，并在动作迅速的情况下完成。避免用力过猛，以免伤害小鼠。为了减少小鼠的压力和惊吓，可以选择在静音环境下进行操作。
（2）大鼠抓取固定法：
● 方法：大鼠较小鼠更大，需要用两只手将其固定。一只手抓住大鼠的颈部，另一只手抓住大鼠的后臀部，将其固定在位置上。可以选择将大鼠固定在实验台上或使用专用的抓取架。
● 注意事项：大鼠的牙齿较锋利，固定时要小心不要被咬伤。为了确保固定的稳定性，建议使用合适的抓取架或夹具来固定大鼠。
（3）兔子抓取固定法：
● 方法：兔子较大且较敏感，抓取固定需要两人合作。一人用手套将兔子的前腿抓住，另一人用手套将兔子的后腿抓住，将其固定在位置上。可以选择将兔子固定在实验台上或使用专用的固定架。
● 注意事项：兔子的后腿比较有力，固定时要小心防止其踢腿。为了确保兔子的安全，建议将兔子固定在兔用专用的固定架上。
（4）猪抓取固定法：
● 方法：猪较大且较强壮，抓取固定需要多人合作。一人用手套抓住猪的颈部，另一人用手套抓住猪的后腿，其他人可以帮助将猪固定在位置上。可以选择将猪固定在猪用专用的固定架上。
● 注意事项：猪的体重较大，固定时要确保其安全稳固。为了防止猪在固定过程中受到过度的压力，建议使用合适的固定架。
（5）鸟类抓取固定法：
● 方法：抓取鸟类需要使用特殊的抓捕网或抓捕器具。当鸟类停留在固定位置时，可以迅速用抓捕网或器具将其捕捉固定住，然后用手套将其稳定住。
● 注意事项：鸟类比较敏感，抓取固定时要尽量减少对其造成的压力和惊吓。建议在操作过程中尽量迅速，以减少对鸟类的影响。
需要注意的是，在进行任何实验动物的抓取固定之前，务必先进行相关的培训和指导，确保操作的正确性和安全性。同时，要遵循动物保护法规和伦理原则，确保实验动物的安全和福利。在具体操作时，还应根据实验目的和动物的特性来选择合适的固定方法。
2、动物给药是在实验过程中将药物或其他物质引入实验动物体内的过程，以研究其生物学效应、药理学特性或其他相关问题。动物给药的方法根据实验要求和药物特性可以有多种选择，常见的动物给药方法
（1）口服给药（Oral administration）：
● 方法：将药物溶解在适当的溶剂中，然后使用灌胃针或饮水瓶等器具将药物溶液直接给予动物口服。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠、兔子等吃固体食物或喝液体的动物。
● 优点：简单易行，不需要手术，适用于大批量实验。
（2）腹腔注射（Intraperitoneal injection，IP）：
● 方法：将药物注射到动物的腹腔腔隙中，通常通过腹部或背部进行注射。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠、兔子等较小的实验动物。
● 优点：吸收较快，给药量较大，适用于一些需要长时间作用的药物。
（3）静脉注射（Intravenous injection，IV）：
● 方法：将药物注射到动脉或静脉血管中，通常通过尾静脉或静脉穿刺进行注射。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠等较小的实验动物。
● 优点：药物直接进入血液循环，快速作用，可控制给药量。
（4）皮下注射（Subcutaneous injection，SC）：
● 方法：将药物注射到动物的皮下组织中，通常在背部颈部等处进行注射。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠等较小的实验动物。
● 优点：给药方便，适用于需要长时间作用的药物。
（5）肌肉注射（Intramuscular injection，IM）：
● 方法：将药物注射到动物的肌肉中，通常在大腿或肩部等处进行注射。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠等较小的实验动物。
● 优点：给药方便，适用于一些药物对皮下组织刺激较大的情况。
（6）呼吸道给药（Respiratory administration）：
● 方法：将药物通过吸入或雾化的方式给予动物呼吸道。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠等较小的实验动物。
● 优点：适用于研究呼吸系统疾病或药物的吸入治疗。
（7）皮肤给药（Transdermal administration）：
● 方法：将药物通过皮肤渗透给予动物，通常通过贴剂或涂抹的方式进行。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠等较小的实验动物。
● 优点：适用于研究皮肤相关问题或进行局部治疗。
（8）注射泵给药（Infusion pump administration）：
● 方法：使用注射泵来精确控制给药速率和剂量，常用于长期或持续给药实验。
● 适用动物：适用于小鼠、大鼠等较小的实验动物。
● 优点：可以精确控制给药参数，适用于需要长时间或持续给药的实验。
需要根据实验要求、动物品种和药物特性选择合适的给药方法，同时遵循动物保护法规和伦理原则，确保实验动物的安全和福利。给药时要小心操作，确保药物正确进入体内，并在实验过程中监测动物的状态，以确保实验的准确性和可靠性。
3、原代细胞提取和培养
原代细胞提取和培养是从活体组织中获得一代的细胞，并在体外特定条件下进行培养的过程。以下是原代细胞提取和培养的一般步骤：
（1）组织取样：
● 选择合适的组织：根据研究目的，选择适合的组织来源，如动物的器官组织、胚胎组织或植物的根、茎等。
● 组织采集：在无菌条件下，使用消毒器具将组织取样切割，并放入含有培养基的培养皿中。
（2）细胞分离：
● 组织消化：使用合适的酶或消化液，将组织样品进行消化，使细胞从组织中分离出来。
● 细胞过滤：通过细胞滤网或其他筛选方法，将细胞与组织碎片分离。
（3）细胞计数：
● 使用显微镜和细胞计数板，对分离出的细胞进行计数，确定细胞的浓度。
（4）细胞接种：
● 将分离出的原代细胞接种到含有培养基的培养皿中。
● 培养基应包含适当的营养物质、生长因子和血清等，以提供细胞生长所需的条件。
（5）培养条件：
● 根据细胞类型的要求，提供适当的培养条件，包括培养基成分、温度、湿度和CO2浓度等。
● 细胞通常在体外的细胞培养箱中培养，以模拟体内的生理环境。
（6）培养观察：
● 定期观察细胞的生长状态，检查细胞的形态和增殖情况。
● 可使用显微镜进行观察，并记录细胞的生长曲线。
（7）细胞传代：
● 随着细胞的不断增殖，细胞数目会增多，达到一定程度后需要进行传代。
● 细胞传代是将细胞从一个培养皿转移到新的培养皿中，以继续培养和繁殖。
原代细胞提取和培养是进行细胞生物学研究和实验的基础，可以用于探索细胞的生物学特性、细胞生长调控、细胞信号传导等许多方面的研究。在进行实验前，必须确保实验操作符合相关伦理和安全规定，并保持严格的无菌条件，以确保实验结果的准确性和可靠性。
